細胞培養常見問題的原因及對策

1. 培養液pH值變化太快：
CO2張力不對。培養瓶蓋擰得太緊。NaHCO3緩沖系統緩沖力不足。培養液中鹽濃度不正確。**、酵母或**污染。
按培養液中NaHCO3濃度增加或減少培養箱內CO2濃度，2.0g/L到3.7g/L濃度NaHCO3對應CO2濃度為5％到10％。（2）改用不依賴CO2培養液。
松開瓶蓋1/4圈。
加HEPES緩沖液至10到25mM終濃度。
在CO2培養環境中改用基于Earle’s鹽配制的培養液，在大氣培養環境中培養改用Hank’s鹽配制的培養液。
丟棄培養物或用*****。

2. 培養液出現沉淀，但pH值不變：
用洗滌劑清洗后殘留磷酸鹽將培養基成分沉淀下來。冰凍保存培養液。
用去離子水反復沖洗玻璃器皿，然后**。
將培養液加熱到37℃，搖動使其溶解如沉淀仍然存在，丟棄培養液。
 
3. 培養液出現沉淀，同時pH 發生變化：
**或**污染。
丟棄培養物或用*****。

4. 培養細胞不貼壁：
胰蛋白酶消化過度；支原體污染；培養液中無貼壁因子。
縮短胰蛋白酶消化時間或降低胰蛋白酶濃度。
分離培養物，檢測支原體。清潔支架和培養箱。如發現支原體污染，丟棄培養物。
 
5. 懸浮細胞成簇：
培養液中含鈣、鎂離子。支原體污染。蛋白酶過度消化使得細胞裂解釋放DNA。
用無鈣鎂平衡鹽溶液洗滌細胞，輕輕吹吸細胞獲得單細胞懸液。
分離培養物，檢測支原體。如發現支原體污染，丟棄培養物。
用DNase I處理細胞。

6. 原代細胞培養物污染：
原代培養組織在進入培養前已污染
培養前用含高濃度***的平衡鹽溶液反復沖洗組織。

7. 培養細胞死亡：
培養箱內無CO2。培養箱內溫度波動太大。細胞凍存或復蘇過程中損傷。培養液滲透壓不正確。培養液種有毒代謝產物堆積。
檢測培養箱內CO2
檢查培養箱內溫度
取新的保存細胞種
檢測培養液滲透壓。注意：大多數哺乳動物細胞能耐受滲透壓為260–350mOsm/kg。加入額外試劑如HEPES或**都有可能影響培養液滲透壓。
換入新鮮培養液

8. 培養細胞生長減慢：
由于更換不同培養液或血清。培養液中一些細胞生長必需成分如谷氨酰胺或生長因子耗盡或缺乏或已被破壞。培養物中有少量**或**污染。試劑保存不當。
比較新培養液與原培養液成分，比較新血清與舊血清支持細胞生長實驗。
增加起始培養細胞濃度。
讓細胞逐漸適應新培養液。
換入新鮮配制培養液。
補加谷氨酰胺或生長因子。
用無***培養液培養，如發現污染，丟棄培養物。或用*****。
血清需保存在-5℃ 到-20℃。培養液需在2–8℃避光保存。含血清完全培養液在2–8℃保存，并在2周內用完。
接種細胞起始濃度太低，細胞已老化，支原體污染。
增加接種細胞起始濃度。
換用新的保種細胞。
分離培養物，檢測支原體。清潔支架和培養箱。如發現支原體污染，丟棄培養物。